У 2022 році заплановано розширення дослідницької сфери ЦКК у напрямі впровадження молекулярно-генетичних методів шляхом придбання приладу для проведення полімеразної ланцюгової реакції SimpliAmpTM Thermal Cycler з системою електрофорезу E-GelTM Power Snap Electrophoresis System Invitrogen (виробник Thermo Fisher Scientific, США).
Дослідницький мікроскоп Axio Imager A1 “Карл Цейс” (Німеччина)
Застосування: Axio Imager A1 – мікроскоп універсального і прикладного використання в галузі біології і медицини. Мікроскоп відповідає сучасному науково-технічному рівню та міжнародному стандарту ISO 9000.
Методи мікроскопії: у прохідному світлі – світле поле та дисперсійно-інтерференційний контраст; у відбиваючому світлі – епіфлуоресценція.
Освітлювальна система прохідного світла вмонтована в основі і забезпечує реалізацію принципу Келера з галогенним джерелом світла. Об’єктиви мають збільшення/числову апертуру: 2,5х0,085 5х/0,15, 10х/0,30, 20х/0,50, 40х/0,75, 63х0,85 і 100х/1,30. Оптична корекція об’єктивів – апохроматична. Окуляри мають лінійне поле з можливістю роботи в окулярах і діоптрійне наведення на різкість для вирівнювання зображення у бінокулярній насадці.
Для дисперсійно-інтерференційного контрасту – DIC слайдер EС PN 5х 0, 10х І, 20х ІІ, РА 20х ІІ і DIC слайдер EС PN 40х ІІ, EС PN 100х ІІІ.
Епіфлуоресцентна освітлювана система забезпечує реалізацію принципу Келера (польова і апертурна діафрагма у відбиваючому світлі) з ртутним джерелом світла (ртутна лампа потужністю 100 Вт).
Для епіфлуоресцентної мікроскопії додані системи фільтрів:
- набір фільтрів №15 (excitation ВР 546/12, beamsplitter FT 580, emission LP 590);
- набір фільтрів №44 (excitation ВР 475/40, beamsplitter FT 500, emission LP 530/50);
- набір фільтрів №49 (excitation G 365, beamsplitter FT 395, emission BP 445/50).
Система аналізу зображення складається з цифрової камери AxioCam 506 color з роздільною здатністю 6 мегапікселів та керуючої станції Microscopy Workstation Compact Core i3 multilingual з програмним забезпеченням ZEN 2.6.
Автоматизований рідинний хромато-мас-спектрометр Agilent 1200 SL/DAD/FD/MSD 6130
Застосування: визначення якісного та кількісного вмісту полярних нелетких термолабільних та термостабільних органічних сполук (фармацевтичні препарати, фізіологічно активні речовини, водорозчинні пестициди, поліароматичні вуглеводні, харчові домішки, деякі компоненти продуктів харчування, а також інші токсиканти й сполуки органічного походження) у матрицях різної складності.
Детектори: прилад оснащений діодно-матричним (для аналізу на декількох довжинах хвиль та реєстрації спектру, 190–950 нм), флуоресцентним (для багатохвильового детектування та оперативної флуоресцентної спектрометрії) та мас-селективним одноквадрупольним детекторами з джерелами іонізації електроспрей (API) та хімічної іонізації (APCI). Діапазон мас (m/z) – 2–3000. Точність визначення мас ±0,13 а.о.м. в режимі сканування. Швидкість сканування – 2500 та 5250 а.о.м./с.
Дослідницький мікроскоп Axio Imager A1 “Карл Цейс” (Німеччина)
Використання цитогенетичних методів у біотестуванні. Дослідження мітотичного циклу у клітинах апікальної меристеми корінців рослинних тест-об’єктів (фото Л.С. Кіпніс та М.Т. Гончарової).
Дослідження функціональної активності клітин. Забарвлення активних ядерце-утворюючих районів хромосом азотнокислим сріблом (фото Ю.О. Стойка)
Вивчення видового складу фітопланктону. Діатомові водорості Melosira varians Ag.; Diatoma vulgare Bory і Navicula tripunctata (O. F. M?ll.) Bory (фото Н.Є. Семенюк)
Визначення морфологічних характеристик мікроводоростей за допомогою програмного забезпечення Axio Vision 4. Зелена водорість Volvox polychlamys Korshikov, ценобій та окрема клітина (фото Л.П. Ярмошенко)
Паразит Aspidogaster conchicola: А – прохідне світло; Б – диференційно-інтерференційний контраст (фото В.І. Юришинця)
Паразит Aspidogaster conchicola: А – прохідне світло; Б – диференційно-інтерференційний контраст (фото В.І. Юришинця)
Дослідження бактеріопланктону. Барвники – Live/dead Baclight viability kit (SYTO 9® та PI)(фото Старосили Є.В.)
Савлучинська М.О., Коновець І.М., Арсан О.М., Мардаревич М.Г.Особливості енергозабезпечення процесів адаптації риб до різних концентрацій фіпронілу та диметоату у водному середовищі. Наук. зап. Терноп. нац. пед. ун-ту. Сер. Біол. 2017. T. 69, №2. С. 70–75.
Rodriguez R., Vakulenko O., Ralchenko S., Kostiuk A., Porublyova L., Konovets I., Voronina I., Obolenskaya M. Quantification of S-adenosyl methionine and S-adenosyl-homocysteine in human placenta and placental explants under homocysteine treatment. International Journal of Mass Spectrometry. 2017. Vol. 421. P. 279–284. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijms.2017.08.002.
Usenko O.M., Konovets I.N., Tarashchuk O.S., Gorbunova Z.N. Phenolcarbonic acids of the submerged aquatic plants and their effect on phytoepiphyton structure. Hydrobiological Journal. 2019. Vol. 55, N 6. P. 55–64. DOI: 10.1615/HydrobJ.v55.i6.50
Ho K.T., Konovets I.M., Terletskaya A.V., Milyukin M.V., Lyashenko A.V., Shitikova L.I., Shevchuk L.I., Afanasyev S.A., Krot Yu.G., Zorina-Sakharova K.Ye., Goncharuk V.V., Skrynnyk M.M., Cashman M.A., Burgess R.M. Contaminants, mutagenicity and toxicity in the surface waters of Kyiv, Ukraine. Marine Pollution Bulletin. 2020, Vol. 155. P. 111153. https://doi.org/10.1016/j.marpolbul.2020.111153.
Rodriguez R., Konovets I., Ralchenko S., Kharkhota M., Kostyuk A., Kosach V., Voronina I., Filimonova N., Obolenskaya M. A low-cost mass spectrometry-based approach for quantifying purines in placental explants. International Journal of Mass Spectrometry. 2021. Vol. 460. Art. 116490. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijms.2020.116490